lunes, 8 de octubre de 2018

Técnica de Gota gruesa


CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO 
industrial y de servicios No.199

DESARROLLO DE TÉCNICAS PARASITOLOGICAS
 3º Semestre 
Laboratorio Clínico

''Técnica de Gota gruesa''

FECHA: 05/10/2018                                     GRUPO: 3º DV                         EQUIPO:1


·INTRODUCCIÓN


La técnica de gota gruesa es rutinaria y consiste en una muestra de gota de sangre, la cual se constituye de varias capas de glóbulos rojos que han sido deshemoglobinizados y se colorean con Giemsia o Wright. 

La concentración de eritrocitos facilita la detección de parásitos, ya que pueden estar presentes en su interior en bajas densidades. Con esta gota gruesa de sangre se prepara un frotis de capa delgada, el cual se fija con metanol y puede ser teñido con Giemsia o Wright, lo que favorece la identificación y observación de las características morfológicas de los parasitos en los glóbulos rojos del  Plasmodium y Trypanosoma cruzi.

  • OBJETIVO
El alumno debe manejar la técnica de gota gruesa desde una buena toma de muestra para diagnosticar parásitos del tipo del Plasmodium o Trypanosoma que se encuentren en la sangre, apoyándose con la realización de extensión de frotis y técnica de tinción, mediante el desarrollo de una práctica de laboratorio y diagnosticar si hay paludismo o tripanosomiasis.

  • FUNDAMENTO
Las técnicas en que se basan las tinciones hematológicas hacen uso de colorantes. Éstos interactúan con los componentes celulares dispuestos a modo de frotis sanguíneo sobre un portaobjetos. Los colorantes son sustancias capaces de fijarse selectivamente según su afinidad química. 

Las tinciones hematológicas se pueden definir como el conjunto de técnicas necesarias para teñir y diferenciar los distintos componentes celulares de la sangre. Estos componentes conforman la fracción forme de la sangre, y gracias a las tinciones se pueden diferenciar en un microscopio óptico.

Un colorante tipo Romanowsky está basado en el uso de una mezcla formada por un colorante ácido (eosina) y uno o varios colorantes básicos (azul de metileno, azur A, azur B y azur C). Las tinciones que se realizan con este tipo de colorante se denominan tinciones panópticas o tinciones tipo Romanowsky.
La tinción de Wright y Giemsa están catalogadas como tinciónes tipo Romanowsky. Del mismo modo que su colorante, que da nombre a la tinción, está catalogado también como colorante tipo Romanowsky.

  • MATERIAL                                                       *REACTIVOS

Lanceta desechable estéril                                  - Sol. Colorante de Wright
- 2 portaobjetos                                                      - Sol. Amortiguadora
Cuba de tinción                                                    
Piceta
Microscopio

TOMA DE MUESTRA: PUNCIÓN CAPILAR

  • Limpieza de la zona de trabajo con alcohol.
  • Limpiar y desinfectar la zona de punción al 70% y dejar secar.
  • Puncionar con lanceta estéril la zona lateral y presionar para obtener la gota de sangre, eliminar la primera gota con gasa estéril y tomar la segunda.


PREPARACIÓN DE FROTIS.

  • Colocar la segunda gota en el centro de un portaobjetos.
  • Con el borde regular de un portaobjetos limpio, se practica un frotis sanguíneo, colocándolo en un Angulo de 45° en relación al primero y deslizándolo derecha a izquierda en un solo movimiento firme y uniforme.
  • Con la punta del segundo portaobjetos, extiende la gota de sangre hasta formar un cuadro de aproximadamente 1 cm., por lado, se deja secar.
  • Se coloca el frotis en la cuba sobre el soporte para tinciones.
  • Se cubre con el colorante de Wright durante 1 min.
  • Sin escurrir se cubre con solución amortiguadora de Wright durante 7 min.
  • Se lava con agua corriente durante 1 min y se deja secar a temperatura ambiente.
  • Se le agrega una gota de aceite de inmersión antes de ponerlo en observación al microscopio. (Se observa con el objetivo de inmersión). 

Técnica de Wrigth

  • Se coloca el frotis seco en el puente de varillas de vidrio y se añade el colorante de Wrigth con un gotero, en cantidad necesaria, para cubrir la preparación durante 3 min.
  • Agregar solución buffer de fosfatos de pH 7.0 en la misma cantidad que el colorante dejándose actuar de 1-5 min.
  • Se lava con agua corriente.
  • Se deja secar y se observa al microscopio en objetivo de inmersión. (añadir una pequeñísima gota de aceite de inmersión). 
Técnica de Giemsa
  • Llenar de agua la cubeta para que los colorantes no se peguen al fondo.
  • Colocar las varillas paralelas sobre los bordes de la cubeta.
  • Colocar las extensiones sanguíneas sobre las varillas paralelas.
  • Cubrir las extensiones con metanol y esperar 4-5 minutos.
  • Decantar para eliminar el metanol.
  • Cubrir las extensiones con solución extemporánea de Giemsa recién diluída a 1/10 (una gota de Giemsa por 9 gotas de agua destilada) y dejar actuar durante 25 minutos.
  • Lavar las extensiones con agua destilada para eliminar los restos de colorante.
  • Secar las extensiones al aire, colocas en vertical.
  • Observar los frotis sanguíneos teñidos al microscopio óptico.


 DESARROLLO
















RESULTADOS

- No se observo señales de parásitos en el campo de observación 




CUESTIONARIO

¿Qué parásitos puede identificar con gota gruesa?

R= Principalmente podemos encontrar Plasmodium spp, Leishmania spp, Tripanozoma cruzi, Toxoplasma Gondii y las Micro filarias. 

¿Qué enfermedad produce a cada uno de estos parásitos y que la caracteriza?

  1. Plasmodium: malaria, P. falciparum, ovale y vivax
  2. Lishmania: Leishmaniasis, 
  3. Tripanozoma Cruzi: enfermedad o mal de Chagas
  4. Toxoplasma Gondii: Toxoplasmosis 

¿Qué es mejor para identificar parásitos gota gruesa o extensión sanguínea?

R= La gota gruesa, pues se observa la morfología de los parásitos, ya que son más abundante que en la extensión y más compactos.

CONCLUSIÓN

Una vez hecha la practica podemos deducir con el apoyo de diferentes fuentes de
investigación que al aplicar las diferentes formas de practica de este método 
se denotaran los parásitos de distintas formas, mostrando con características claras 
en el campo de observación la morfología de cada parásito.

Definiendo un poco mas el objetivo de esta técnica, el cual se enfoca en la 
observación y comprobación de cada microorganismo dentro de un organismo vivo.

REFERENCIAS

http://www.uv.mx/personal/sortigoza/files/2011/0/manual_para_gral_2012.pdf.

https://www.franrzmn.com/tincion-de-giemsa/

https://www.franrzmn.com/tincion-de-wright/


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