CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO
industrial y de servicios No.199
DESARROLLO DE TÉCNICAS PARASITOLOGICAS
3º Semestre
Laboratorio Clínico
''Técnica de Gota gruesa''
FECHA: 05/10/2018 GRUPO: 3º DV EQUIPO:1
http://www.uv.mx/personal/sortigoza/files/2011/0/manual_para_gral_2012.pdf.
·INTRODUCCIÓN
La técnica
de gota gruesa es rutinaria y consiste en una muestra de gota de sangre, la
cual se constituye de varias capas de glóbulos rojos que han sido
deshemoglobinizados y se colorean con Giemsia o Wright.
La concentración de
eritrocitos facilita la detección de parásitos, ya que pueden estar presentes
en su interior en bajas densidades. Con esta gota gruesa de sangre se prepara
un frotis de capa delgada, el cual se fija con metanol y puede ser teñido con
Giemsia o Wright, lo que favorece la identificación y observación de las
características morfológicas de los parasitos en los glóbulos rojos del Plasmodium y Trypanosoma cruzi.
- OBJETIVO
- FUNDAMENTO
Las técnicas en que se basan las
tinciones hematológicas hacen uso de colorantes. Éstos interactúan con los
componentes celulares dispuestos a modo de frotis sanguíneo sobre un
portaobjetos. Los colorantes son sustancias capaces de fijarse selectivamente
según su afinidad química.
Las tinciones hematológicas se pueden definir como
el conjunto de técnicas necesarias para teñir y diferenciar los distintos
componentes celulares de la sangre. Estos componentes conforman la fracción
forme de la sangre, y gracias a las tinciones se pueden diferenciar en un
microscopio óptico.
Un colorante tipo Romanowsky está
basado en el uso de una mezcla formada por un colorante ácido (eosina) y uno o
varios colorantes básicos (azul de metileno, azur A, azur B y azur C). Las tinciones
que se realizan con este tipo de colorante se denominan tinciones panópticas o
tinciones tipo Romanowsky.
La tinción de Wright y Giemsa están catalogadas como tinciónes tipo Romanowsky. Del mismo modo que su colorante, que
da nombre a la tinción, está catalogado también como colorante tipo Romanowsky.
- MATERIAL *REACTIVOS
- Lanceta desechable estéril - Sol. Colorante de Wright
- 2 portaobjetos - Sol. Amortiguadora
- Cuba de tinción
- Piceta
- Microscopio
TOMA DE MUESTRA: PUNCIÓN CAPILAR
- Limpieza de la zona de trabajo con alcohol.
- Limpiar y desinfectar la zona de punción al 70% y dejar secar.
- Puncionar con lanceta estéril la zona lateral y presionar para obtener la gota de sangre, eliminar la primera gota con gasa estéril y tomar la segunda.
PREPARACIÓN DE FROTIS.
- Colocar la segunda gota en el centro de un portaobjetos.
- Con el borde regular de un portaobjetos limpio, se practica un frotis sanguíneo, colocándolo en un Angulo de 45° en relación al primero y deslizándolo derecha a izquierda en un solo movimiento firme y uniforme.
- Con la punta del segundo portaobjetos, extiende la gota de sangre hasta formar un cuadro de aproximadamente 1 cm., por lado, se deja secar.
- Se coloca el frotis en la cuba sobre el soporte para tinciones.
- Se cubre con el colorante de Wright durante 1 min.
- Sin escurrir se cubre con solución amortiguadora de Wright durante 7 min.
- Se lava con agua corriente durante 1 min y se deja secar a temperatura ambiente.
- Se le agrega una gota de aceite de inmersión antes de ponerlo en observación al microscopio. (Se observa con el objetivo de inmersión).
Técnica de Wrigth
- Se coloca el frotis seco en el puente de varillas de vidrio y se añade el colorante de Wrigth con un gotero, en cantidad necesaria, para cubrir la preparación durante 3 min.
- Agregar solución buffer de fosfatos de pH 7.0 en la misma cantidad que el colorante dejándose actuar de 1-5 min.
- Se lava con agua corriente.
- Se deja secar y se observa al microscopio en objetivo de inmersión. (añadir una pequeñísima gota de aceite de inmersión).
Técnica de Giemsa
- Llenar de agua la cubeta para que los colorantes no se peguen al fondo.
- Colocar las varillas paralelas sobre los bordes de la cubeta.
- Colocar las extensiones sanguíneas sobre las varillas paralelas.
- Cubrir las extensiones con metanol y esperar 4-5 minutos.
- Decantar para eliminar el metanol.
- Cubrir las extensiones con solución extemporánea de Giemsa recién diluída a 1/10 (una gota de Giemsa por 9 gotas de agua destilada) y dejar actuar durante 25 minutos.
- Lavar las extensiones con agua destilada para eliminar los restos de colorante.
- Secar las extensiones al aire, colocas en vertical.
- Observar los frotis sanguíneos teñidos al microscopio óptico.
DESARROLLO
RESULTADOS
CUESTIONARIO
¿Qué parásitos puede identificar con gota gruesa?
R= Principalmente podemos encontrar Plasmodium spp, Leishmania spp, Tripanozoma cruzi, Toxoplasma Gondii y las Micro filarias.
¿Qué enfermedad produce a cada uno de estos parásitos y que la caracteriza?
- Plasmodium: malaria, P. falciparum, ovale y vivax
- Lishmania: Leishmaniasis,
- Tripanozoma Cruzi: enfermedad o mal de Chagas
- Toxoplasma Gondii: Toxoplasmosis
¿Qué es mejor para identificar parásitos gota gruesa o extensión sanguínea?
R= La gota gruesa, pues se observa la morfología de los parásitos, ya que son más abundante que en la extensión y más compactos.
CONCLUSIÓN
Una vez hecha la practica podemos deducir con el apoyo de diferentes fuentes de
investigación que al aplicar las diferentes formas de practica de este método
se denotaran los parásitos de distintas formas, mostrando con características claras
en el campo de observación la morfología de cada parásito.
Definiendo un poco mas el objetivo de esta técnica, el cual se enfoca en la
observación y comprobación de cada microorganismo dentro de un organismo vivo.
REFERENCIAS
http://www.uv.mx/personal/sortigoza/files/2011/0/manual_para_gral_2012.pdf.
https://www.franrzmn.com/tincion-de-giemsa/
https://www.franrzmn.com/tincion-de-wright/
No hay comentarios.:
Publicar un comentario